迁移、趋化与侵袭三类实验，从不同维度解析细胞运动能力。
原理：细胞被种植在上层室，追踪其向含有培养基的下层室的移动，测量细胞通过多孔膜的一般迁移能力。
方法：在设定的孵育期后，对迁移到膜下层的细胞进行固定、染色和定量，衡量细胞固有运动能力和对周围环境的反应。
原理：Transwell 迁移实验的专门版本，特别评估细胞对存在于下层室的化学信号（趋化因子）的定向移动。
方法：下层室填充含有趋化因子的培养基，对细胞向趋化因子的定向迁移进行定量，研究免疫反应和癌症转移中的重要过程。
原理：在多孔膜上引入模拟细胞外基质（ECM）的屏障（如 Matrigel），细胞必须先降解 ECM 屏障才能通过孔隙迁移，模拟组织侵袭过程。
方法：细胞接种在涂有类 ECM 屏障的上层室，孵育后评估其穿透基质并迁移到下层室的能力，适用于研究癌细胞侵袭性及抗转移治疗的有效性。
趋化实验在药物发现中用于测量细胞对化学刺激物的反应性迁移。细胞被放置在带有多孔膜的 96 孔板中，其向趋化因子的移动被定量化（通常通过 ATP 含量），从而评估可能影响这一过程的潜在药物化合物，这在炎症和肿瘤学领域至关重要。实验的具体细节（如细胞类型和趋化因子）会极大影响结果。
趋化实验针对不同靶点：上图展示了不同药物对针对特定趋化因子受体的趋化实验的影响。选择性 CCR2 拮抗剂 RS 504393 用于 THP-1 细胞测试；强效选择性 CCR4 拮抗剂 AZD2098 在 CD4+ T(reg) 细胞上评估；CCR8 拮抗剂 AZ084 用于 H9 细胞测试；GPR84 拮抗剂 GLPG1205 在中性粒细胞上评估。细胞迁移百分比与药物浓度相对应，提供了这些药物在调节细胞趋化中药效的检测。
三种实验对于理解癌细胞行为的不同方面都有重要价值，从基本的运动性到复杂的侵袭机制。
特别是趋化实验，对于研究免疫细胞向感染部位或肿瘤环境的迁移至关重要。
广泛用于评估治疗性化合物对细胞运动、趋化性和侵袭性的影响，助力抗癌和抗炎药物开发。
迁移实验测量细胞通过多孔膜的一般迁移能力；趋化实验专门评估细胞对下层室趋化因子的定向移动；侵袭实验在多孔膜上加入 Matrigel 等 ECM 屏障，细胞需先降解基质才能迁移，模拟组织侵袭过程。
细胞被放置在带有多孔膜的 96 孔板中，其向趋化因子的移动通常通过 ATP 含量进行定量化，从而评估可能影响这一过程的潜在药物化合物，在炎症和肿瘤学领域具有重要价值。
平台案例包括：THP-1 细胞上测试选择性 CCR2 拮抗剂 RS 504393，CD4+ T(reg) 细胞上评估 CCR4 拮抗剂 AZD2098，H9 细胞上测试 CCR8 拮抗剂 AZ084，中性粒细胞上评估 GPR84 拮抗剂 GLPG1205，以迁移百分比对应药物浓度反映药效。
细胞接种在涂有类 ECM 屏障的上层室，孵育后评估其穿透基质并迁移到下层室的能力，尤其适用于研究癌细胞的侵袭性以及抗转移治疗的有效性。
可与同平台的细胞粘附检测（评估整合素-配体相互作用，迁移侵袭的起始环节）、细胞划痕检测（创伤愈合模型量化迁移）以及细胞凋亡检测等下游读数组合，形成完整的细胞功能评价体系。
